(一)植物組織培養的概念高等植物的組織培養(tissue culture)技術是指分離一個或數個體細胞或植物體的一部分在無菌條件下培養的技術。通常我們所說的廣義的組織培養,是指通過無菌操作分離植物體的一部分(即外植體explant),接種到培養基上,在人工控制的條件進行培養,使其生成完整的植株。 (二)植物組織培養的生理依據  細胞全能性(cell totipotency):植物體的每一個細胞都攜帶有一套完整的基因組,並具有發育成為完整植株的潛在能力。 植物生長調節物質對於植物細胞組織的分化和決定具有關鍵性作用。它包括:生長素類、細胞分裂素類、赤黴素、脫落酸、乙烯等。 生長素類主要用於愈傷組織的形成,體細胞胚的產生及試管苗的生根。常用的有2,4-DNAA(萘乙酸)、IBA(吲哚丁酸)、IAA(吲哚乙酸)等。其作用強弱為2,4-D>NAA>IBA>IAA 細胞分裂素類則有促進細胞的分裂與分化,延遲組織的衰老,促進芽的產生等作用。常用的有ZipKT 氯吡脲)、6-BA6-苄氨基腺嘌呤)、ZT(玉米素)等作用強弱順序為。Zip>KT>6-BA>ZT 赤黴素則有促進已分化的芽伸長生長,打破種子休眠的作用。常用的為GA3 (三)植物組織培養的類型 組織培養按培養物件可分為組織或愈傷培養、器官培養、植株培養、細胞和原生質體培養等。

1.組織或愈傷組織培養(tissue, callus culture)為狹義的組織培養,是對植物體的各部分組織進行培養,如莖尖分生組織、形成層、木質部、韌皮部、表皮組織、胚乳組織和薄壁組織等等;或對由植物器官培養產生的愈傷組織進行培養,二者均通過再分化誘導形成植株。 2.器官培養(organ culture)即離體器官的培養,根據作物和需要的不同,可以包括分離莖尖、莖段、根尖、葉片、葉原基、子葉、花瓣、雄蕊、雌蕊、胚珠、胚、子房、果實等外植體的培養 3.植株培養(plant culture)是對完整植株材料的培養,如幼苗及較大植株的培養。 4.細胞培養(cell culture)是對由愈傷組織等進行液體振盪培養所得到的能保持較好分散性的離體單細胞或花粉單細胞或很小的細胞團的培養。 5.原生質體培養(protoplast culture)是用酶及物理方法除去細胞壁的原生質體的培養。 (四)植物組織培養的特點  組織培養是本世紀發展起來的一門新技術,由於科學技術的進步,尤其是外源激素的應用,使組織培養不僅從理論上為相關學科提出了可靠的實驗證據,而且一躍成為一種大規模、批量工廠化生產種苗的新方法,並在生產上越來越得到廣泛的應用。 植物組織培養之所以發展如此之快,應用的範圍如此之廣泛,是由於具備以下幾個特點: 1. 培養條件可以人為控制   組織培養採用的植物材料完全是在人為提供的培養基質和小氣候環境條件下進行生長,擺脫了大自然中四季、晝夜的變化以及災害性氣候的不利影響,且條件均一,對植物生長極為有利,便於穩定地進行周年培養生產。 2.生長週期短,繁殖率高   植物組織培養是由於人為控制培養條件,根據不同植物不同部位的不同要求而提供不同的培養條件,因此生長較快。另外,植株也比較小,往往20-30d為一個週期。所以,雖然植物組織培養需要一定設備及能源消耗,但由於植物材料能按幾何級數繁殖生產,故總體來說成本低廉,且能及時提供規格一致的優質種苗或脫病毒種苗。 3.管理方便,利於工廠化生產和自動化控制   植物組織培養是在一定的場所和環境下,人為提供一定的溫度、光照、濕度、營養、激素等條件,極利於高度集約化和高密度工廠化生產,也利於自動化控制生產。它是未來農業工廠化育苗的發展方向。它與盆栽、田間栽培等相比省去了中耕除草、澆水施肥、防治病蟲害等一系列繁雜勞動,可以大大節省人力、物力及田間種植所需要的土地。 植物組培技術
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、植物組織培養的發展  植物組織培養的研究可以追溯到20世紀初期,根據其發展情況,大體可以分為三個時期。 1.萌芽階段   組織培養技術的蓬勃發展只是近50年的事,但它的整個歷史可以追溯至19世紀末和上世紀初。20世紀初,在SchleidenSchwann所發展起來的細胞學說的推動下,1902年德國植物學家Haberlandt提出了高等植物的器官和組織為許多細胞組成的觀點,以及植物細胞全能性的理論,即植物的體細胞,在適當的條件下,具有不斷分裂和繁殖,發育成完整植株的潛在能力。他首次發表了植物離體細胞培養實驗的報告。1912年,Habefiandt的學生Kotte和美國的Robins在根尖培養中獲得了組織培養的成功。Kotte採用了無機鹽、葡萄糖、蛋白腖、天冬醯胺,及添加各種氨基酸的培養基。Robins用含無機鹽、葡萄糖或果糖的瓊脂培養基,培養了長度為1.453.75cm的豌豆、玉米和棉花的莖尖,形成了一些缺綠的莖和根。 2.奠基階段   Haberlandt的實驗之後,直到1934年美國的White由番茄根建立了第一個活躍生長的無性繁殖系,並反復轉移到新鮮培養基中繼代培養,使根的離體培養實驗獲得了真正的成功,並在以後28年間培養了1600代。這之後,White又以小麥根尖為材料,研究了光、溫度、通氣、pH值、培養基組成等各種培養條件對生長的影響,並于1937年建立了第一個組織培養的綜合培養基,其成分均為已知化合物,包括3B族維生素,即吡哆醇、硫胺素和煙酸,該培養基後來被定名為White培養基。與此同時,Gautherer1934)在研究山毛柳和黑楊等形成層的組織培養實驗中,提出了B族維生素和生長素對組織培養的重要意義,並於1939年連續培養胡蘿蔔根形成層獲得首次成功。同年,White由煙草種間雜種的瘤組織, Nobecourt由胡蘿蔔均建立了與上述類似的連續生長的組織培養物。因此,GauthererWhiteNobecourt一起被譽為組織培養學科的奠基人。我們現在所用的培養方法和培養基,基本上都是由這三位科學家建立的。後來,White1943年發表了《植物組織培養手冊》專著,使植物組織培養開始成為一門新興的學科。

3.快速發展和應用階段   40年代Skoog和崔徵在煙草莖切段和髓培養以及器官形成的研究中發現,腺嘌呤或腺苷可以解除培養基中生長素(IAA)對芽形成的抑制作用,而能誘導形成芽,從而明確了腺嘌呤與生長素的比例是控制芽和根形成的主要條件之一。即這一比例高時,產生芽;這一比例低時,則形成根;相等則不分化。在尋找促進細胞分裂的物質過程中,Miller等人於1956年發現了激動素。不久即知道激動素可以代替腺嘌呤促進發芽,並且效果可增加3萬倍。結果上述控制器官分化的激素模式變為激動素與生長素的比例關係。這方面的成功發現,有力地推動了植物組織培養的發展。 1952年;MorelMartin通過莖尖分生組織的離體培養,從已受病毒侵染的大麗花中首次獲得無病毒植株。19351945Muir把單細胞放在一張鋪在愈傷組織上面的濾紙上培養,使細胞發生了分裂,即實施了看護接種技術,使單細胞培養獲得初步成功。 1960年,Cocking等人用真菌纖維素酶分離植物原生質體獲得成功。1971年,Takebe等在煙草上首次由原生質體獲得了再生植株,這不僅在理論上證明了無壁的原生質體同樣具有全能性,而且在實踐上為外源基因的導入提供了理想的受體材料。80年代中期以來,對禾穀類作物的原生質體培養也相繼告捷,在這方面中國學者做出了重要貢獻。1962年印度Guha等人成功地在毛葉曼陀羅花藥培養中,由花粉誘導得到單倍體植株,從而促進了花藥和花粉培養的研究。 以後相繼在煙草、水稻、小麥、玉米、番茄、辣椒、草莓、蘋果等多種植物培養中獲得成功,其數目達到160多種,其中煙草、水稻和小麥等的花藥育種培養在中國取得了引入注目的成就。 1960年,Morel提出了一個離體無性繁殖蘭花的方法,其繁殖係數極高。由於這一方法有很大的應用價值,很快被蘭花生產者所採用,迅速建立起蘭花工業。1973Carlson等通過兩個煙草物種之間原生質體融合,獲得了第一個體細胞雜種,Cocking等宣導的原生質體培養和體細胞雜交,研究得到了迅速發展,已經能使矮牽牛和煙草屬的雜種細胞增殖分化生成雜種植株。 在整個植物組織培養發展的歷史中,我國學者做出多方面的貢獻,除了前述的崔徵的研究成效以外,還有1993年李繼侗等關於玉米等植物離體根尖培養的研究工作,以及羅士韋關於幼胚和莖尖培養,李正理關於離體胚的研究培養、王伏雄等關於幼胚的研究培養工作。 植物組培技術
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三、植物組織培養的過程(一)培養材料的採集  組織培養所用的材料非常廣泛,可採取根、莖、葉、花、芽和種子的子葉,有時也利用花粉粒和花藥,其中根尖不易滅菌,一般很少採用。 對於木本花卉來說,闊葉樹可在一、二年生的枝條上採集,針葉樹種多採種子內的子葉或胚軸,草本植物多採集莖尖。 在快速繁殖中,最常用的培養材料是莖尖,通常切塊在0.5釐米左右,如果為培養無病毒苗而採用的培養材料通常僅取莖尖的分生組織部分,其長度在0.1毫米以下。 (二)培養材料的消毒  1.先將材料用流水沖洗乾淨,最後一遍用蒸餾水沖洗,再用無菌紗布或吸水紙將材料上的水分吸幹,並用消毒刀片切成小塊。 2.在無菌壞境中將材料放入70%灑精中浸泡3060秒。 3.再將材料移入漂白粉的飽和液或0.01%升汞水中消毒10分鐘。 4.取出後用無菌水沖洗三、四次。(三)製備外植體  將已消毒的材料,用無菌刀、剪、鑷等,在無菌的環境下,剝去芽的鱗片、嫩枝的外皮和種皮胚乳等,葉片則不需剝皮。然後切成0.20.5釐米厚的小片,這就是外植體。在操作中嚴禁用手觸動材料。 (四)接種和培養  1.接種  在無菌壞境下,將切好的外植體立即接在培養基上,每瓶接種410個。 2.封口  接種後,瓶、管用無菌藥棉或蓋封口,培養皿用無菌膠帶封口。 3.溫度  培養基大多應保持在25℃左右,但要因花卉種類及材料部位的不同而區別對待。 4.增殖  外植體的增殖是組培的關鍵階段,在新梢等形成後為了擴大繁殖係數,需要繼代培養。把材料分株或切段轉入增殖培養基中,增殖培養基一般在分化培養基上加以改良,以利於增殖率的提高。增殖1個月左右後,可視情況進行再增殖。 5.根的誘導  繼代培養形成的不定芽和側芽等一般沒有根,必須轉到生根培養基上進行生根培養。1個月後即可獲得鍵壯根系。 (五)組培苗的練苗移栽試管苗從無菌到光、溫、濕穩定的環境進入自然環境,必須進行煉苗。一般移植前,先將培養容器打開,於室內自然光照下放3天,然後取出小苗,用自來水把根系上的營養基沖洗乾淨,再栽入已準備好的基質中,基質使用前最好消毒。移栽前要適當遮蔭,加強水分管理,保持較高的空氣濕度(相對濕度98%左右),但基質不宜過濕,以防爛苗。 植物組培技術
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四、植物組織培養的應用 植物組織培養成為生物科學的一個廣闊領域,除了在基礎理論的研究上佔有重要地位以外,還在農業生產中也得到越來越廣泛的應用。 (一)植物組織培養的快速繁殖  用植物組織培養的方法進行快速繁殖(rapidpropagation)是生產上最有潛力的應用,包括花卉觀賞植物、蔬菜、果樹、大田作物及其他經濟作物。快繁技術不受季節等條件的限制,生長週期短,而且能使不能或很難繁殖的植物進行增殖。 快速繁殖可用下列手段進行:通過莖尖、莖段、鱗莖盤等產生大量腋芽;通過根、葉等器官直接誘導產生不定芽;通過愈傷組織培養誘導產生不定芽。試管快速繁殖應用在下列生產或研究中:(1)繁殖雜交育種中得到的少量雜交種,以及保存自交系、不育系等。(2)繁殖脫毒培養得到的少量無病毒苗。(3)繁殖生產上急需的或種源較少的種苗。由於組織培養週期短,增殖率高及能全年生產等特點,加上培養材料和試管苗的小型化,這就可使有限的空間培養出大量的植物,在短期內培養出大量的幼苗。組織培養突出的優點是“快”,通過這一方法在較短時期內迅速擴大植物的數量,以一個莖尖或一小塊葉片為基數,經組織培養一年內可增殖到10 000100 000株。 (二)脫毒  植物在生長過程中幾乎都要遭受到病毒病不同程度的危害,有的種類甚至同時受到數種病毒病的危害,尤其是很多園藝植物靠無性方法來增殖,若蒙受病毒病,代代相傳,越染越重,甚至會造成極嚴重的後果。自從Morell952年發現採用微莖尖培養方法可得到無病毒苗(virus free)後,微莖尖培養就成為解決病毒病危害的重要途徑之一。若再與熱處理相結合,則可提高脫毒培養的效果。對於木本植物,莖尖培養得到的植株難以發根生長,則可採用莖尖微體嫁接的方法來培育無病毒苗。 組織培養無病毒苗的方法已在很多作物的常規生產上得到應用,如馬鈴薯,甘薯,草莓,蘋果,香石竹,菊花等。而且已有不少地區建立了無病毒苗的生產中心,這對於無病毒苗的培養、鑒定、繁殖、保存、利用和研究,形成了一個規範的系統程式,從而達到了保持園藝植物的優良種性和經濟性狀的目的。 (三)體細胞無性系變異和新品種培育 植物組織培養過程中往往存在大量的變異,這種變異稱為體細胞無性系變異。具有如下特點: 1.變異的無方向性:既有有利的變異,也有有害的變異既有形態變異,也有生理變異。 2.變異的普遍性:變異在組織培養中經常發生,出現在組織培養的各個時期。既有數量性狀變異,又有品質性狀變異。既有農藝性狀變異,又有經濟性狀變異;既有表型變異,又有生理變異。與自然變異與輻身誘變相比,體細胞無性系變異廣泛而普遍。且易於獲得純合個體。 3.植物體細胞無性系變異的類型:一類為可遺傳變異,主要是由於遺傳物質的變化引起的(尤以基因突變為主)。另一類是不可遺傳的變異,為生理型變異。往往是由於培養過程中外加的激素及其它化學物質的刺激引起。如葉形、育性等。 4.引起植物體細胞無性系變異的原因:激素的刺激為主要原因。高濃度的GAIAA,會造成畸形胚的高頻發生,TDZ可使植株產生白化苗或玻璃化植株。24-D則使培養細胞發生染色體數量變化。隨培養時間的延長,染色體變異頻率升高,變異的性狀和範圍手擴大。 5.植物體細胞無性系變異的利用價值及途徑:它是一種重要的遺傳變異來源,是一種重要的遺傳資源。對於育種有重要的應用價值。 (四)單倍體育種 花藥、花粉的培養在蘋果、柑橘、葡萄、草莓、石刁柏、甜椒、甘藍、天竺葵等約20種園藝植物得到了單倍體植株。在常規育種中為得到純系材料要經過多代自交,而單倍體育種,經染色體加倍後可以迅速獲得純合的二倍體,大大縮短了育種的世代和年限。 (五)種質保存 用植物組織培養技術保存種質具有以下優點:

1)在較小的空間內可以保存大量的種質資源。

2)具有較高的繁殖係數。

3)避免外界不利氣候及其他栽培因素的影響,可常年進行保存。

4)不受昆蟲、病毒和其他病原體的影響。

5)有利於國際間的種質交換與交流。

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1839年德國學者就指出,如果提供適宜的外界條件,多細胞有機體的每一個細胞都能獨立地發育。1901年美國遺傳學家第一次用全能性一詞來表示生物細胞獨立發育的能力。植物細胞全能性是指植物細胞在離開機體後可以在適宜條件下再生為完整的植株。1934年美國學者pr懷特第一次實現了離體根在人工培養液中的無限生長。1946年中國學者羅士韋培養菟絲子莖尖並觀察到花的形成。20世紀50年代法國rh韋特莫爾和g.莫雷爾從只帶有1~2個葉原基的莖尖獲得再生的無病毒植株,並將這一方法用於經濟植物的快速繁殖。1939年pr懷特和法國學者rj戈特雷分別從胡蘿蔔和煙草的形成層組織,誘導出一種設有特定形態結構和功能的組織,即癒傷組織,並發現生長素(吲哚乙酸)是誘導癒傷組織形成和維持其連續生長的關鍵因素。以後植物組織培養學家的注意力便集中於如何控制癒傷組織的器官發生和胚胎髮生。1948年,美國學者f.斯科格和中國學者崔發現在培養基中添加腺嘌呤可促使煙草癒傷組織產生不定芽,從而提出了特定的化學物質可以誘導器官發生的觀點。1955年,同一實驗室的co米勒等發現了誘導芽形成效率更高的一種腺嘌呤衍生物──激動素,後來其他研究者發現了另外幾種。由於結合使用了生長素和細胞分裂素,植物組織培養學家不僅能夠有效地誘導各種植物的各種器官產生癒傷組織,而且能使培養的植物組織實現根和芽的分化,再生完整植株,迄今已得到植株再生的植物種類接近千種。關於植物離體胚發生的研究,自從1925年德國f.萊巴赫將未成熟的亞麻屬種間雜種胚培養成植株以來,人們一直想找出能夠影響離體胚發育的活性物質。1934年,中國植物學家最先註意到銀杏的胚乳提取物能明顯促進人工培養的銀杏胚的生長和發育。7年以後j.van奧弗貝克發現椰子乳(未成熟椰子的液體胚乳)對未成熟的曼陀羅胚的離體發育具有更加明顯的促進作用。由於椰子乳容易取得,使用方便,後來被廣泛用作培養基中的一種添加物。1958年美國學者fc斯圖爾德用含椰子乳的液體培養基培養胡蘿蔔的細胞,使之長成胚狀體和小植株,首次用實驗證明瞭植物細胞的全能性。這一實驗也使人們想到在椰子乳中可能存在一種能夠誘導胚發生的物質──“胚胎因數”,但一直未能分離出這種物質。現在已能使百餘種植物的組織或細胞在離體培養條件下形成胚狀體。1960年,k.貝格曼用平板法得到單細胞無性系(由單個細胞發育成的再生植株),為現代的單細胞突變體篩選奠定了基礎。同年庫金用纖維素酶除去,製備出大量的原生質體並開始進行原生質體培養。1971年,田中等首次從煙草原生質體培養出植株。1972年,aj卡爾森通過原生質體的融合得到了煙草屬種間的細胞雜種,開闢了體細胞雜交這一新領域。1964年,s.古哈和sc馬赫什瓦裡用花藥培養的方法使曼陀羅的未熟花粉發育為單倍體植株。20世紀70年代,中國學者歐陽俊聞、朱至清、胡含、王敬駒、孫敬三等得到了小麥、小黑麥、楊樹等許多經濟植物的花粉植株,並首先用這種方法來選育農作物新品種。在這一時期,傳統的莖尖培養和組織培養技術也廣泛地用於快速繁殖各種花卉和林木,出現了工廠化育苗的新興產業。誘導胚發生的因素不止一個,植物本身的特性、培養基的營養組成和激素平衡以及外界的物理條件等,都會影響離體細胞的胚發生。80年代中期,有人提出離體胚發生是由特定的基因控制的,外部因素通過對這些基因的表達的調節來影響胚狀體的發育。 組培植物- 培養技術  使離體的器官、組織和細胞能夠生長、增殖和分化的主要技術措施有:外植體的消毒和接種從植株切下的用於組織培養的器官或組織片稱外植體。它必須是無菌的,通常用次氯酸鈉或昇汞溶液等消毒劑對培養的植物材料進行表面消毒,然後在無菌的條件下,例如在超淨工作臺中,將材料切割成大小適宜的外植體,然後種植到培養基上。 組培植物- 培養基  組織培養的基質。由細胞生長發育所必需的各種無機鹽(大量的微量元素)、有機營養物(氨基酸和醣類)、生物活性物質(維生素類)、植物生長調節物質(、細胞分裂素、等)、天然提取物(椰子乳和酵母提取物等)和水所組成。也可在培養基中加入瓊脂使之成為凝膠態的固體培養基。培養基的成分隨培養物和培養目的的不同可作適當的調整。除了培養基的化學成分外,還應考慮物理因素,特別是培養基的滲透壓。過高或過低的滲透壓都會使植物細胞受害乃至死亡。有時培養基中還加入甘露醇、山梨醇等作為專門的滲透劑來提高培養基的滲透壓。配製好的培養基需經過熱壓消毒或過濾消毒方可使用。  組培植物- 培養方式  不同的目的,採用不同的培養方式。①固體培養:將器官或組織置於固體培養基上培養。②平板培養:將細胞或原生質包埋在固體培養基中,在培養皿中做成平板進行培養。③液體培養:有3種方式:浸沒在培養液中放置不動的靜止培養;將器官或組織(例如花藥)漂浮在液體表面的漂浮培養;將裝有培養液和培養物的培養器置於搖床或轉床上的懸浮培養。為了在顯微鏡下觀察和追蹤細胞的生長和分裂,可將細胞或原生質體接種在培養板的微室中進行微室培養,也可將含細胞的液滴滴在蓋玻片上,倒扣在凹玻片上進行懸滴培養。④滋助培養:將一​​張濾紙放在培養的癒傷組織上,在濾紙上接種培養物,利用癒傷組織的分泌物來滋助被培養的細胞。⑤發酵培養:為了工廠化生產,在發酵罐或生物反應器中大量培養植物細胞。⑥固相化細胞培養:把植物細胞粘附在一種支持物上,放置在生物反應器中,在流動的培養液中進行培養。 組培植物- 培養條件培養物生長和發育需要適當的溫度、光照(或黑暗)和濕度。最適宜的溫度因植物種類而異,一般為25~30℃。光照強度因培養的目的而改變,光線的質量(波長)和光週期會影響細胞分化和形態建成,有時也需加以調整。對濕度的要求相對不嚴格。通常專門設計可以控制光線和溫度的培養室,小規模的組織培養可以在人工培養箱或人工氣候箱內進行。組培植物-
應用  植物學基礎理論研究在嚴格控制的條件下,植物細胞或組織培養物可以作為一種實驗系統,研究細胞的分裂、生長和分化,組織和器官的建成以及在這些過程中發生的生理和生物化學變化。例如,用同步分裂的培養細胞來測定中每一階段的生物化學變化,用癒傷組織系統來研究各種激素對組織和器官發生的作用以及用原生質體系統來觀察細胞壁再生時所起的作用等。組織培養物也是體細胞遺傳變異的理想實驗材料,可以從它們得到各種類型的單細胞無性系,進行和分析。此外原生質體培養物,還是研究植物病毒感染和病理學的良好實驗材料。組培植物-
植物快速繁殖也叫微繁殖。主要是利用器官、組織和細胞培養的方法快速、大量生產有經濟價值的試管苗,然後移入溫室或苗圃栽培,供應市場需要。如採用莖尖培養方法還可去除植物中所帶的病毒,大量生產無毒苗,改善苗木的質量,提高經濟產量。在馬鈴薯蘭花草莓等植物上已用此方法進行工廠化育苗。組培植物-
植物品種改良植物組織培養技術已滲透到傳統植物育種的每個環節,也是現代植物遺傳工程的一個組成部分。利用幼胚培養技術可以克服雜種不育,得到在自然條件下得不到的種間或屬間雜種。在品種間雜交中採用花藥培養方法可以控制雜種分離,提高選擇效率,大大縮短育種週期。利用組織培養中出現的自髮變異和誘髮變異能夠篩選出許多優質、抗病和抗逆的新品種。在進行基因工程時,必須以原生質體或懸浮培養的細胞體作為外源基因的受體,在導入基因後再通過細胞培養將它們培養成轉化了的再生植株,創造出新的品系。組培植物-
細胞大量培養在植物細胞懸浮培養的基礎上,可以在發酵罐或生物反應器中大量培養經濟植物的細胞,從培養液或細胞中分離有關的代謝次生產物,如苷類、生物鹼、色素和輔酶等,擺脫對農業和植物原料的依賴,用工業方式生產植物化學產物。 人們形象的把用於快速繁殖優良品種的植物組織培養技術,叫做植物的微型繁殖技術,也叫快速繁殖技術。 微型繁殖- 優越性繁殖速度快、繁殖係數大用試管快繁技術繁殖, 可節約繁殖材料,只取原材料上的一小塊組織或器官就能在短期內生產出大量市場所需的優質苗木, 每年可以繁殖出幾萬甚至數百萬的小植株,既不損傷原材料又可獲得較高的經濟效益。繁殖方式多  有短枝扡插、芽增殖、原球莖、器官分化和胚狀體發生。適用的品種多,據文獻報導組培成功的植物種類達1500多種,正真能產業化生產的有幾百種。特別適用於不能通過扡插繁殖植物的快速繁殖,如蘭花、百合、非洲菊等等。雖然木本植物的組培比草本要難,通過科研人員的努力,已在楊樹、桉樹許多植物上獲得成功。能保持原品種的優良性狀  試管繁殖是一種微型的無性繁殖 ,它取材於同一個體的體細胞而不是性細胞,因此其後代遺傳性非常一致,能保持原有品種的優良性狀。對保質、保純有著特殊作用。可獲得大量的統一規格、高質量的苗木,苗木商品性好。 可獲得脫毒苗  採用莖尖培養的方法或結合熱處理除去 ​​絕大數植物的病毒、真菌和細菌,獲得毒苗,使植株生長勢強、花朵增大、色澤鮮豔、抗逆能力提高、產花數量增加。可進行週年工廠化生產試管快繁是在人工控制的條件下進行的集約化生產,不受自然環境中季節和惡劣天氣的影響。所以不受季節限制,可以全年進行連續生產, 生產效率高。從取材→接種→培養→生​​根→移栽,可像工廠化一樣生產,​​所以這一技術在農業上的應用被稱為是農業上的一次“革命”。對反季節生產有著特殊作用,如在夏天不耐高溫的倒掛金鐘、四季海棠等花卉,夏天可在培養室內進行組培苗生產,秋天進行花卉生產。經濟效益高花卉組織培養快速繁殖由於種苗在培養瓶中生長,立體擺放,所需要的空間小,節省 ​​土地。生產可按一定的程式嚴格執行,生產過程可以微型化、精密化,能最大限度發揮人力、物力和財力,取得很高的生產效率,如在一個200平方米的培養室內一年可生產試管苗上百萬株。如按每株1元計算,每年產值上百萬元。微型繁殖-
存在問題  成本高解決方法:在進行組培產業時通過選擇高效益、名特優、珍稀等植物進行組培商品化生產,取得更高的經濟效益。煉苗難、成活率解決方法:現在通過培育健壯的組培苗、調控環境因素、選擇適宜的基質,使組培苗移栽成活率達到90%以上。微型繁殖 - 優越性

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"Economic plant tissue culture
research application and

development
centers"

"經濟植物組培研究應用發展中心"-"EPTCRAD"

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http://www.youtube.com/watch?v=Hq17kInSwGM&feature=share&list=PLCB343749F717CB3B

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http://www.youtube.com/watch?v=t1BAJw-2Gy8

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臺灣紅豆杉──抗癌藥物紫杉醇的另一個家



何政坤 行政院農業委員會林業試驗所育林組



http://web1.nsc.gov.tw/ct.aspx?xItem=7878&ctNode=40














灣紅豆杉(學名:Taxus
sumatrana
(Miq.) de Laub.,紅豆杉科)或稱南洋紅豆杉,屬於裸子植物,是臺灣貴重針葉五木之一。臺灣針葉五木包括檜木類、臺灣杉、香杉、臺灣肖楠與本文所述的臺灣紅豆杉,它們都是臺灣最珍貴的樹種,木材品質優異,被分類為針一級木,多屬於高大的喬木。紅豆杉稀疏地分布在臺灣全島海拔二千公尺上下的山區,在相當於人的胸部高度處,量取的直徑都在一公尺以上,樹高達二十公尺以上,樹幹略扭曲,比起其他四種針葉木,它是樹形較矮胖、樹姿較醜的樹種。
可是別看它醜,它包被紅色假種皮的果實,狀如紅豆,是所有針葉五木中果實最鮮豔漂亮的。它的木材也比其他四種顏色豐富,樹心的部分是紅色,邊緣的部分是黃色,是很好的雕刻用材。木材雕刻家曾將臺灣紅豆杉木材雕刻成一人高的觀音,售價高達一千萬元。
民國七十年代,臺灣紅豆杉因懷璧其罪,不斷地慘遭盜伐;政府查禁後,初期對沒入的盜伐木,採取公開標售的方式處理,在民國七十八年時,一棵盜伐木標售到一百八十萬元,創下臺灣盜伐木標售的最高紀錄。為了杜絕這些破壞臺灣天然林木的山老鼠,先盜伐再藉政府標售方式合法取得,在民國七十九年時立法院特地立法禁止臺灣紅豆杉盜伐木標售,終於澈底斷絕臺灣紅豆杉遭盜伐利用的厄運。
抗癌藥物紫杉醇 約在民國五十五年時,美國的「國家癌症研究中心」從太平洋紫杉(學名: Taxus
brevifolia
Nutt.)的樹皮中萃取出紫杉醇(Paclitaxel 商品名 Taxol),發現它具有抗癌的效果,經過一連串的臨床試驗,民國七十八年正式製成製劑用來治療卵巢癌與乳癌。由於它的治療效果甚佳,使得太平洋紫杉被預言為「二十世紀對人類貢獻最大的植物」。
不過太平洋紫杉生長緩慢,從樹皮萃取紫杉醇的產量又甚低,以治療一個卵巢癌病患需要二公克紫杉醇而言,就需要砍伐二到三棵 50
~ 60
年生的太平洋紫杉,如要萃取一公斤的紫杉醇,就需要砍伐二千至四千株的太平洋紫杉。所以當時一公克的紫杉醇售價高達八百美元,於是全世界研發人員開始投入如何量產紫杉醇的研究工作。
對林木育種家而言,最直接的方式就是選育高紫杉醇含量的品種,而且最好是枝葉含有高濃度紫杉醇的品種,畢竟枝葉是可以不斷再生、不斷採收的。如果紫杉醇的取得是來自於樹皮,因為樹木一經剝皮就會死亡,其生產成本勢必過高,而且收成時間也過久。
對化學家而言,則是利用合成的方式,由簡單且容易取得的化學單元體合成紫杉醇,民國八十三年實驗成功了,總共經過 28 個步驟,化學家可在試管內完全合成紫杉醇,當時可是一件大事!雖然最後合成的紫杉醇產率僅有 0.5%,不過化學家並不氣餒,他們知道如果將合成的步驟縮短,就有商業化生產的價值。 經過多方尋覓,最後發現紅豆杉的萃取物中含有濃度甚高的紫杉醇主結構 10-去乙醯巴卡亭III(簡稱
10-DAB
),這種成分在少數紅豆杉品種的枝葉中濃度高達 1,000 ppmppm,每公斤乾重的毫克數),是紫杉醇的三倍以上。利用 10-DAB 作為合成的起始物,只要約 10 個步驟就可合成紫杉醇,在實驗室中的合成率可達 80% 以上,這種方法稱為半化學合成法,以別於全合成法。
對生物學家而言,是積極尋找可以生產紫杉醇的微生物,他們發現寄生在太平洋紫杉上的一種真菌可以生產紫杉醇,由於真菌生長快,用來生產紫杉醇相當看好。對組織培養學家而言,就是想辦法在發酵槽內培養紅豆杉細胞,利用細胞來生產紫杉醇;組織培養學家本來就很有興趣利用細胞培養生產人類需要的藥物,但是成果並不理想,主要的原因是這些藥品的價格還沒有高到使廠商有投入量產的意願。如今終於有一種這麼昂貴的藥物,而且需求量又不斷增加。
根據最近的統計,紫杉醇在全球的市場需求量高達十八億美元,占所有抗癌藥物市場的 25%!因此帶動了全世界細胞培養的研究熱潮,目前最大的發現就是找出了一種叫做甲基茉莉酸(methyl jasmonate)的誘導物質,它可使紅豆杉細胞生產紫杉醇的產量暴增
10
倍以上。 另外,目前最熱門的生物技術學家又如何看待紫杉醇的生產呢?他們則是從找尋合成紫杉醇的基因著手,近三年內他們差不多已經將這些基因選殖出來了,接著便是如何將基因轉殖到紅豆杉細胞中,甚至是微生物,讓它們為我們生產廉價的紫杉醇。
紫杉醇的原料來源 前面談了許多紫杉醇的生產方法,經過 10 年的開發,紫杉醇原料價格從剛開始的每公克八百美元,滑落到目前的三百美元,價格雖降低頗大,但是仍相當昂貴。大家一定很好奇,究竟哪種生產方法是原料的主要來源?答案有點出乎意料,目前是以半化學合成法為主,而原料就是 10-DAB,提供 10-DAB 來源的植物,主要是歐洲紅豆杉的枝葉!
採取半化學合成法的主要原因,除了 10-DAB 在枝葉中的含量是紫杉醇的三倍以上外,另一個重要因素是天然的紫杉醇再怎麼純化,總會含有微量的雜質,這些微量雜質會隨栽培方法、環境變化而異,造成品管上的困難。同樣是純度 99% 的天然紫杉醇,永遠難以保證不同批原料的雜質是一致的,這些雜質均須通過檢驗,證明它們對人體無害,才能進一步製成藥劑。
反之,半合成紫杉醇經過合成步驟,它的純度高且每批產品品質幾乎一致,合乎藥檢的標準,儘管比天然紫杉醇生產麻煩,但是生產成本不一定比天然紫杉醇高。目前 10-DAB 原料是每公克 90 美元以下,假如每二公克可合成一公克紫杉醇,那就是投入 180 美元可以生產三百美元的藥物,仍有 120 美元的價差,扣除生產成本後仍有極大的利潤。不過這種半化學合成法的技術已經成為專利了,用此一技術生產紫杉醇,要付出高額的專利費。目前,國內的製藥界另行開發了獨特的半合成技術,也可以利用 10-DAB 生產紫杉醇了。 當全世界紛紛投入紅豆杉屬相關樹種的開發研究時,臺灣紅豆杉究竟是否有潛力發展出跟國外具有競爭力的品種或生產模式?然而,當我們開始注意到本土的紅豆杉是否有開發價值時,已經是民國八十三年的事了,比國外的研究足足晚了將近五年。因此當國內學者提出臺灣紅豆杉的優良化學品系選育計畫時,就有人質疑是否可以跟國外具有十分完備的研究機構競爭?如果真有優良的化學品種,以臺灣如此高的土地與人力成本,還會有生產空間嗎?
當學者們想進一步研發,利用臺灣紅豆杉細胞培養生產紫杉醇時,就有人質疑紅豆杉細胞的培養技術國外已經取得專利了,臺灣有能力跟國外競爭嗎?研發出來的技術可能也在國外專利的範圍內,還會有經濟價值嗎?常常我們也會自我反問這些問題,最後總覺得為了了解臺灣本土的資源,建立並保存可能產品化的機制,應該責無旁貸地進行相關研究。
前面提過臺灣紅豆杉的木材價值已經很高了,大家或許認為栽植臺灣紅豆杉經濟價值鐵定極大,可是針對 15 公分直徑小樹的年輪加以計算,竟然高達兩百多歲,對於胸徑一公尺的大樹需要多少年才能長成,就可想而知了。
為了避免這些大樹的基因流失,林業試驗所在民國八十三年,開始進行臺灣紅豆杉的調查與枝葉含紫杉醇濃度的分析;在進行調查分析的同時,也加以採種,利用種子發芽育苗,此外也採集枝條,利用扦插發根成苗,以保存該母樹的基因;更進一步從優良母樹的枝葉進行組織培養,誘導未分化的細胞團(稱為癒合組織)產生,探討以細胞培養生產紫杉醇的可行性;最後透過生物技術,將外來基因成功轉殖到臺灣紅豆杉細胞內。
不可否認的,國內對臺灣紅豆杉的研發工作仍是跟著國外的腳步,但是,這並不意味著我們的產品就會輸給國外。以下就讓我們來看看臺灣利用紅豆杉生產紫杉醇的研究與產業發展潛力。
利用臺灣紅豆杉生產紫杉醇 要在國內以大面積栽培臺灣紅豆杉,再利用機械化採割枝葉以萃取
10-DAB
原料,其栽培方式就像經營茶園一樣,被選育出來的臺灣紅豆杉化學品系必須具備下述條件:臺灣現有產業界具備將 10-DAB 合成紫杉醇的專利技術;10-DAB 在樹梢枝葉中的含量必須高過國外品種;枝葉產量高且耐修剪;由於臺灣低海拔面積較多,所以該品系必須具備耐熱性,可以在低海拔栽培。
為了選育具有這些條件的品系,於是從全臺灣採集天然母樹的枝葉,分析 10-DAB 的含量,將含量較高的品系篩選出來,利用扦插繁殖法,培育出跟天然母樹基因完全一樣的營養系分株,稱之為營養系苗,然後將這些營養系苗栽培到臺灣低中海拔,進行生長與 10-DAB 含量的檢測試驗。結果發現有一些優良的化學品系,可以符合上述的條件,在海拔約七百公尺左右,栽植四年後,它們的枝葉產量每株平均約可生產三公斤,曬乾後約有一公斤重,可萃取出一公克左右的 10-DAB,如果一公頃種植一萬株,就可生產出約 10 公斤的 10-DAB。 此一產值吸引了具有合成紫杉醇技術的臺灣製藥公司加入量產的研發計畫,目前正積極利用扦插繁殖的技術,採集這些優良化學營養系的枝條,利用具有定時噴水系統的溫室,直接扦插在含有泥炭土與蛭石的介質中,約三個月就有 80% 插穗發根成苗,再經三個月培養後,就可移到栽培地栽植。此項計畫預計在五年內建立面積一百公頃的生產區,屆時臺灣就可以使用到由臺灣紅豆杉生產的紫杉醇了。
一般植物細胞培養的方法,都是先採集植物的組織或器官,如葉片、莖段等,經過酒精與漂白水消毒後,培養在含有營養成分與植物生長激素的固體培養基中。在植物生長激素的誘導下,讓植物的組織細胞分裂成鬆軟的細胞團,然後將這個細胞團移入含有培養液的三角瓶內,培養液的體積一般是三角瓶體積的五分之一,約為 50 毫升,這樣可以增加液體搖盪的速度及溶氧的能力,然後將三角瓶放在迴轉式震盪器中培養,迴轉的次數一般都在每分鐘一百次左右。
鬆軟細胞團在培養液中不斷地迴旋震盪,1 ~ 50 個細胞左右的小細胞團就會脫離原細胞團,最後逐漸成為均勻的細胞散布在培養液中,此一過程稱為懸浮細胞培養。由於細胞整個浸泡在培養液中,吸收養分的面積比固體培養僅靠接觸表面的吸收來得大,所以細胞的增殖速率也遠比固體培養的大。
當細胞在培養液中已經快速生長且紫杉醇濃度產量也很高時,這時候就將它們移到 2 ~ 5 公升的小型生物反應器中培養。生物反應器的基本構造是一圓柱型玻璃或不銹鋼筒,內含攪拌葉片使細胞能懸浮在培養液中,同時設有通氣管,將空氣打入培養液內,提供細胞呼吸所需的氧氣。因為在相同的單位面積上,一個生物反應器可以培養比三角瓶大上數倍的容積,所以在商業性生產時就必須採用生物反應器。如果細胞在小型的生物反應器中仍然有很高的紫杉醇產量,在商業性量產規模的規畫下,此時生物反應器的容積可高達數十噸。
根據多年的研究,發現利用細胞培養生產紫杉醇,最關鍵的因子就是優良的細胞株!就像前面所述的化學優良品系選育一樣,來自不同母樹的細胞株,在培養液中的表現也會呈現極大的差異。優良的細胞株需要具備生長快、紫杉醇濃度高,而且經過長期培養不會降低生產力等特性。經過將近八年的努力,長期監控數十個細胞株的表現,終於選育出符合上述特性,可以用來生產紫杉醇的優良細胞株,目前如利用三角瓶培養,該細胞株可以每天每公升生產五毫克以上的紫杉醇。
根據報導,國外用來培養紅豆杉細胞的生物反應器的容積已高達 75 公噸,如果將該細胞株放入 75 公噸的生物反應器中生產,每天將可生產 75 公克的紫杉醇,也就是一年可生產約 27 公斤的紫杉醇!不過目前尚未看到產品。林試所的研究團隊證實將本土選的優良細胞株培養在二公升的生物反應器中,發現仍能維持很高的紫杉醇產量,此一結果已引起業界的投資興趣,規劃用更大的生物反應器來生產紫杉醇。
遺傳工程與生物技術被認為是影響二十一世紀人類生活最重要的科技。此一技術是否能用來增加培養細胞的紫杉醇產量呢?答案是肯定的!一個成功的遺傳工程除了要有影響紫杉醇合成的基因外,還要有將基因轉殖到紅豆杉細胞的技術。目前已知控制紫杉醇合成的基因大約有 10 個以上,其中最重要的基因是將 10-DAB 催化為巴卡亭(BC)的去乙醯巴卡亭轉移酶(DBAT)基因。 由於控制紫杉醇的基因數目太多了,在遺傳工程上要將這麼多的基因全部轉殖到紅豆杉細胞上,技術甚為困難,通常會選擇最關鍵的基因轉殖,來達到目標產物生成的目的。10-DAB 與巴卡亭都是極佳的產物,因為它們均可經半合成而成為紫杉醇,而且分子大約是紫杉醇的三分之二,細胞較容易將它們釋放到培養液中,所以從培養液中可以不斷地得到此二項產物。
如果將可令 DBAT 大量合成的順義 DBAT 基因或可抑制 DBAT 合成的反義 DBAT 基因轉殖到紅豆杉細胞內,前者會增加 DBAT 基因的表現,使 10-DAB 快速合成巴卡亭;而後者剛好相反,將 DBAT 基因的表現抑制,所以細胞僅能合成到 10-DAB,如此一來細胞就僅能生產 10-DAB 產物。目前研究人員已經成功選殖出 DBAT 基因,並且嘗試將它轉殖到臺灣紅豆杉的細胞內,預期它能夠對細胞生產 10-DAB 產生影響,又因為它的分子量小於紫杉醇,可以不斷地分泌到培養液中,這樣就可以建立連續收穫 10-DAB 的生產模式。 前基因轉殖的方法雖然很多,但以農桿菌為媒介的轉殖法最為常用。農桿菌原是一種土壤的病原菌,當植物受傷時,細胞會分泌一種酚類物質,誘使農桿菌內的小環形染色體(稱之為質體)中的一段去氧核醣核酸(DNA)切離菌體,移轉到植物細胞內,並嵌入細胞內的染色體中,讓植物細胞產生該段
DNA
上的各種功能。 段 DNA 具有生產促進細胞產生腫瘤或不定根的植物生長激素基因,以及供農桿菌生長的特殊營養成分。當植物細胞帶有該段 DNA 後,就會形成腫瘤,或者形成毛狀根群。如果利用野生的菌種去感染臺灣紅豆杉,就會產生可自行生長的細胞腫瘤或毛狀根群,與正常細胞需要植物生長激素才能生存完全不同。由於此一段 DNA 插入到植物細胞染色體上的位置不同,插入的數目也不一樣,因此轉殖基因細胞與毛狀根群在生產紫杉醇的表現,也會產生很大的差異。
目前它們的生產量尚低於正常的細胞培養,不過生長速率卻相當快,培養容易且帶有獨特的基因標誌,不會侵犯到目前許多的細胞培養專利技術是其重要的特性。林試所從許多野生的菌種中篩選能夠很快感染臺灣紅豆杉的菌株,它們的感染率可高達 30% 以上,選擇此一菌種,利用遺傳工程的技術,將致病的基因切除改植入 DBAT 基因,然後再去感染台灣紅豆杉的細胞,這樣就可獲得轉殖 DBAT 基因的紅豆杉細胞了! 利用臺灣紅豆杉生產紫杉醇,在可見的未來,將會為臺灣創造數十億元的商機。利用大面積栽培台灣紅豆杉是比較傳統的生產方式,投資額大,但植物產量容易控制,風險低。利用細胞培養或根部培養,是一種可以用自動化工廠經營的生產模式,然而每一個製程都必須小心,防止生物反應器可能遭受到細菌與霉菌的污染,同時還要防止細胞在培養過程中難以避免的變異(突變),也就是說每批產品可能會有相當程度的差異,不過由於目前細胞的產量頗高,細胞輕微的變異仍可以忍受。為了防止細胞變異的發生,需要開發出低溫保存細胞的方法,一旦利用生物反應器培養的細胞劣化,立刻可以用低溫保存的細胞加以替換。
轉殖有植物生長激素基因的細胞,因培養在不含植物生長激素的培養液中,產生細胞變異的機率比較小,又帶有基因標誌,可以避開國外在培養基與細胞株上的專利,是頗有發展潛力的技術,但仍須進行更多的研究,以提高紫杉醇的產量。至於轉殖 DBAT 基因以促進紅豆杉細胞生產 10-DAB BC,則是未來看好的細胞培養方式。 雖然國外科學家從太平洋紫杉與歐洲紅豆杉選殖出來的 DBAT 基因已經獲得專利,而從臺灣紅豆杉選殖出來的 DBAT 基因與該二樹種胺基酸序列的相似度高達 95% 以上,如果國內使用該基因必須付專利費;但紅豆杉的基因轉殖系統,其技術發展在臺灣已頗為成熟,相信一定可以比國外更早一步得到轉殖 DBAT 基因的細胞,尤其是反義 DBAT 基因(並未被取得專利),以大量生產 10-DAB 供臺灣業界直接使用。 最後,在臺灣紅豆杉的研究過程中,讓我們深深地體會到研發技術固然重要,但擁有豐富的植物資源更為重要!如果我們研究的是外來品種,要選出優良的化學品系本身就很困難,要適應臺灣的環境更是需要漫長的時間檢驗。臺灣紅豆杉的研發腳步雖然慢,但是整個研發體系是建立在最基礎的傳統育種收集,到各種珍貴品系的選拔,才能建立自有的化學品系、細胞培養與遺傳工程技術,加上國內的製藥界也不斷地追求技術的創新,讓國內的研究團隊,能夠有機會利用本土的臺灣紅豆杉,為臺灣創造大規模生產紫杉醇的產業。


 



 




 




 




 




 




 




 






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紫杉醇生產工藝如下:1 紅豆杉樹皮粉碎(越細越好),85%~95%酒精(料液比是多少?)35-55熱回流浸提三次(每一次需要多少時間?).2 50-70真空減壓濃縮至熱測比重1.1~1.2g/ml.3 氯仿萃取,萃取液濃縮成膏狀,得紫杉醇含量1%氯仿膏.4 將紫杉醇含量1%氯仿膏加氯仿溶解完全.5 加矽膠攪拌均勻,涼乾,過篩.6 填裝到層析柱中,氯仿-甲醇梯度洗脫,TLC檢測,分段合併濃縮,得紫杉醇含量5~8%半成品.7 將紫杉醇含量5~8%半成品加丙酮溶解完全,加矽膠攪拌均勻,涼乾,過篩.8填裝到層析柱中,丙酮-石油醚梯度洗脫,TLC檢測,分段合併濃縮,得紫杉醇含量20 ~25%半成品.用丙酮-石油醚系統結晶3~4次,抽濾.50真空減壓乾燥,得紫杉醇含量75~80%半成品.10 16Mpa壓力層析分離,TLC檢測,分段合併濃縮.11 目標段濃縮物丙酮-石油醚結晶,抽濾,乾燥,得紫杉醇含量99.5%成品.12 去除膠質的過程為:高壓矽膠層析柱層析去除膠質,同時將紫杉烷化合物分離為紫杉醇、三尖杉寧鹼、紫杉醇3部分。

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http://www.chemicalbook.com/ChemicalProductProperty_CN_CB3273425.htm 

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http://www.mmh.org.tw/MackayInfo2/article/B307/580.htm
http://www.mmh.org.tw/info-news-detail.asp?id=1073

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 高效液相層析儀的構成組件 *A:溶劑(耗材) *B:2溶劑切換開關閥 *C:水泵 *D:壓力阻尼器 *E:Mischkammer *F:手動進樣器 *G:層析管柱(耗材) *H:高效液相色譜法控制器 *I:檢測器(紫外吸收光譜儀等) *J:檢測數據A/D轉換器(數據輸出系統) *K:電腦(用作數據記錄器數據分析系統) *L:印表機
儀器分析林志城、薛文發編著

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植物荷爾蒙在楊梅種子發芽上的角色陳舜英1) 郭幸榮2) 簡慶徳3)

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